1. 試劑
·從lacY recombinant大腸桿菌T206制備的膜泡
·n-Octyl-β-D-glucoside
·膽酸鈉 (Sodium cholate)
·Dithiothreitol (DTT)
·取自大腸桿菌的磷脂 (Avanti Biochem.公司)
·DEAE-Sepharose CL-6B (GE Healthcare公司)
·磷酸鉀 (Potassium Phosphate)
·乳糖 (lactose)
·尿素 (生化級(jí))
·磷酸
2. 方法
以下操作,在沒有特指時(shí)的溫度是指4℃,用Vortex mixer攪拌。
1) 要得到約10 mg的蛋白質(zhì),可以取外翻型膜泡 (inside-out vesicles) 12.5 mg,加入1 ml緩沖液 (50 mmol/l 磷酸鉀,pH7.5、0.5 mmol/l DTT,10 mmol/l乳糖)制成懸濁液。
2) 在室溫條件下,邊攪拌,邊滴加等量的尿素溶液(10 mmol/l)。
3) 在冰浴中放置10分鐘后,在175,000× 的速度條件下離心1小時(shí)。
4) 沉淀用1.75 ml緩沖液 (50 mmol/l磷酸鉀,pH7.5) 制成懸濁液。邊攪拌,邊加入膽酸鈉溶液 (20%w/v,pH7.8),終濃度為6%。
5) 在冰浴中放置20分鐘后,在26,000×g的速度條件下離心15分鐘。
* 以上操作是為了去除膜中不需要的蛋白質(zhì)。
6) 沉淀用5 ml緩沖液 (10 mmol/l磷酸鉀,pH5.8) 制成懸濁液,離心,重復(fù)此步驟1-2次。
7) 沉淀用1.45 ml緩沖液 (10 mmol/磷酸鉀,pH5.8) 制成懸濁液,加入
8) 在上述溶液中加入146 µl n-Octyl-β-D-glucoside (15% w/v,10 mmol/l磷酸鉀,pH5.8),使終濃度為1.25%,
蛋白質(zhì)/磷脂/去垢劑的比例約為1:3:10。
9) 攪拌時(shí)請(qǐng)注意不要起泡沫,在冰浴中放置10分鐘后攪拌,然后在175,000× 的速度下離心1小時(shí)。
10) 取上清,用磷酸溶液 (10 mmol/l 磷酸, 含1.25% n-Octyl-β-D-glucoside) 調(diào)節(jié)pH至5.8。
11) 用DEAE-Sepharose 純化柱純化1 ml蛋白質(zhì)提取液 (含約300 µg 蛋白質(zhì))。
溶出液:10 mmol/l 磷酸鉀,pH5.8,1 mmol/l DTT,20 mmol/l乳糖, 0.25 mg 磷脂/ml, 1.25%(w/v) n-Octyl-β-D-glucoside
II. 用 n-Heptyl-β-D-thioglucoside提取腸炎弧菌的膜結(jié)合性 5'-核苷酸酶
1. 試劑
·采用French Pressure法制備的膜泡
·n-Heptyl-β-D-thioglucoside
·EDTA-2K
·Dithiothreitol (DTT)
·Tricine
·MOPS
·Tris
·氯化鈉
·硫酸鎂
·2-Mercaptoethanol
·DEAE-Sepharose CL-6B (GE Healthcare公司)
2. 方法
以下操作,在沒有特指時(shí)的溫度是指4℃。
1) 取腸炎弧菌的的膜泡 (含145 mg蛋白質(zhì)) 用30 ml緩沖液(3 mmol/l Tricine-Tris、pH8.0、0.5 mmol/l EDTA-2K、1 mmol/l 2-Mercaptoethanol) 制成懸濁液。在冰浴中輕輕地?cái)嚢杓s30分鐘后,105,000×g離心1小時(shí)。
2) 加入含有n-Heptyl-β-D-thioglucoside 40 mmol/l的緩沖液(20 mmol/l MOPS-Tris、pH7.5、5 mmol/l硫酸鎂、1 mmol/l DTT) 制成懸濁液,蛋白質(zhì)濃度約為1 mg/ml。在冰浴中輕輕地?fù)u勻約15分鐘。
3) 105,000×g離心1小時(shí),得到5'-核苷酸酶的上清。
4) 用DEAE-Sepharose 純化柱純化上清。溶出液:50 mmol/l MOPS-Tris、pH 8.0、5 mmol/l硫酸鎂、1 mmol/l DTT、40 mmol/l n-Heptyl-β-D-thioglucoside、100→400 mmol/l (梯度)氯化鈉
III. 用CHAPS提取巨噬細(xì)胞的細(xì)胞骨架
1.試劑
·S.typhimurium LPS (Difco公司)
·胎牛血清 (FBS)
·肝素 (heparin)
·Dulbecco's MEM (DMEM)
·Plasticcoverslip (SUMITOMO BAKELITE 公司、celldesk)
·PIPES
·HEPES
·GEDTA
·Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA、Sigma公司)
·氯化鎂
·CHAPS (在硅膠干燥器中干燥約2周后使用)
2. 方法
1) 用滅菌蒸餾水將 S.typhimurium LPS配制成200 µg/ml。給小鼠 (SLC-ICR、7-10周齡) 腹腔注射,劑量為0.25 ml/只。
2) 5-6天后,用10 mmol/l HEPES(添加10% FBS、10 U/ml肝素、含DMEM pH7.1)洗凈腹腔,收集細(xì)胞。
3) 用
4) 用含有10% FBS的DMEM調(diào)節(jié)細(xì)胞濃度至10e6個(gè)/ml,移至培養(yǎng)皿中。
5) 在
6) 將蓋玻片一張一張放入
7) 在含有10% FBS的DMEM中加入稀釋的PMA,在CO2培養(yǎng)箱中
8) 用室溫DMEM將貼付著細(xì)胞的蓋玻片洗凈10分鐘。
9) 用室溫的PHEM 緩沖液 (60 mmol/l PIPES、25 mmol/l HEPES、10 mmol/l GEDTA、2 mmol/l氯化鎂、pH6.9)
清洗2次 (10分鐘/次)。
10) 預(yù)先將蓋玻片放置在
11) 用PHEM緩沖液配制0.5%CHAPS溶液*2,*3,取15 ml加入*4直徑為
將貼付著細(xì)胞的蓋玻片放在如上的培養(yǎng)皿中(2張蓋玻片/1個(gè)培養(yǎng)皿),放置3分鐘后會(huì)露出細(xì)胞骨架,這時(shí)輕輕振搖培養(yǎng)皿45-60秒。
12) 用
*1 清洗不足的話,會(huì)降低細(xì)胞骨架露出率。
*2 CHAPS溶液要在使用前1小時(shí)內(nèi)配制,混合時(shí)注意不要產(chǎn)生泡沫。CHAPS的濃度一定要準(zhǔn)確地配制成0.5% (8.132 mmol/l )。如果濃度過(guò)高,會(huì)增加從蓋玻片上掉落的細(xì)胞,一部分的細(xì)胞骨架會(huì)溶解下來(lái)。如果濃度過(guò)低,會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞膜的溶解效果差。
*3 CHAPS的溶液量,1個(gè)直徑
*4 請(qǐng)注意振搖過(guò)強(qiáng)的話,會(huì)增加細(xì)胞脫落。
IV. 用CHAPS從原生質(zhì)體分離液胞
1. 試劑
·從Atriplex gmelini的綠葉中制得的原生質(zhì)體 (1.2 mol/l山梨糖醇中分離)
·CHAPS
·GEDTA (EGTA)
·HEPES
·山梨糖醇
·Tris
2.方法
1) 取1 ml 原生質(zhì)體放入巴氏瓶中*1。
2) 加入50 ml緩沖液 (1.0 mol/l山梨糖醇、1 mmol/l GEDTA、0.5 mmol/l CHAPS、20 mmol/l HEPES-Tris、pH8.0)。120×g離心3分鐘。
3) 收集上清液中的液胞 (約1.2 ml)*2,放入巴氏瓶中。
4) 用緩沖液 (1.0 mol/l 山梨糖醇、20 mmol/l HEPES-Tris、pH8.0) 稀釋19倍。120×g離心3分鐘, 回收上清液中懸浮的液胞。
*1 用0.5 mol/l 山梨糖醇分離原生質(zhì)體時(shí),添加10% Ficoll 400等,使原生質(zhì)體懸浮。
*2 原生質(zhì)體的上清液不濃縮的話, 使用Ficoll 400等,需要提高溶液的比重。